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小鼠大學問之Cre-lox系統的常見問題與解答匯總_abio生物試劑品牌網

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上一期我們給大家介紹了Cre-lox系統的基本原理,不知道大家有沒有理解呢?點擊查看:小鼠大學問 | Cre-Lox系統核心原理全解析

本期我們給大家帶來了Cre-lox系統的一些常見問題。幫助大家更好的利用Cre-lox系統進行研究。

Cre小鼠的建立方法對Cre表達的影響

早期構建Cre小鼠主要采用隨機轉基因技術。具體而言,是將帶有外源特異性啟動子的Cre基因序列隨機整合到小鼠基因組的某個位置。然而,采用這種方法得到的轉基因小鼠,其整合位點和基因拷貝數均不可控。由于整合位置的隨機性,Cre重組酶的表達可能會受到染色體狀態的干擾,例如,DNA甲基化等表觀遺傳修飾可能會導致Cre基因的沉默,進而影響Cre重組酶的正常表達。

因此,更為可靠的方法是通過基因打靶(ES細胞或CRISPR/Cas9途徑)的方式將單拷貝的Cre基因定點整合到內源基因座中。主要有以下兩種:
(1)取代型表達Cre表達框直接插入到內源基因起始密碼子前;

(2)共表達型的構建方式是將Cre表達框通過2A(自剪切多肽)或IRES(內部核糖體進入位點序列)元件敲入到小鼠內源基因的3'端。
 


圖1. 取代型表達
 


圖2. 共表達

如何測試一個新的Cre小鼠品系

通常我們會利用Reporter小鼠與Cre小鼠雜交來驗證Cre的表達譜。Reporter小鼠一般是在Rosa26位點插入了帶有lox-stop-lox終止盒以及緊隨其后的報告基因。在沒有Cre酶存在的情況下,報告基因不會表達。當與Cre小鼠雜交后,Cre酶會識別并切除lox-stop-lox終止盒,使報告基因得以表達,通過觀察報告基因的表達情況,可推斷出Cre酶的活性及其作用范圍。


圖3. 共表達[1]


Cre重組酶的意外表達

通常,我們希望Cre重組酶僅在特定組織/細胞中發揮作用,但其意外表達(即“異位”表達)仍然可能發生,這可能導致非預期的重組事件發生。因此,在構建Cre小鼠模型時,選擇高特異性的Marker基因至關重要。這些基因可以高效、精確地驅動Cre表達,從而降低漏表達或異位表達的險。應盡量避免使用高表達但非特異的Marker基因,以減少實驗誤差。

在使用Reporter小鼠驗證組織特異性Cre小鼠時,常常會發現報告基因的表達比預期的更為廣泛。為確認是否發生了生殖系中的Cre意外表達,可通過將不同性別的子代小鼠(Cre/+; flox/+)分別與野生型小鼠交配,以獲得第二代子代。如果第二代小鼠的報告基因表達范圍顯著擴大,這表明很有可能發生了Cre的生殖系表達。因為Cre介導的重組可能發生在配子形成的二倍體階段,從而導致后代即使未攜帶Cre,仍表現出報告基因的表達。


若Cre小鼠發生生殖系表達,使用該Cre小鼠進行條件性基因打靶時,需謹慎選擇性別和交配方式。例如,母系遺傳的Cre小鼠品系應使用雄性Cre陽性小鼠進行繁育,而父系遺傳的Cre小鼠品系則需使用雌性Cre陽性小鼠進行繁育。此外,誘導型Cre小鼠是一種有效的解決方案,通過僅在成年期或胚胎發育晚期激活Cre重組活性,可避免生殖系的意外表達,從而獲得更可靠的條件性基因打靶模型。
 

條件性敲除小鼠的繁育策略

cKO小鼠通常需要把兩個等位基因全部刪除,才能達到基因敲除的目的,故其flox等位基因的基因型應該為純合。一般情況下,Cre工具鼠一般是半合子/雜合子。(保證cre基因的拷貝數一致,避免重組效率不同導致實驗可重復性差;Cre小鼠的構建方式為轉基因隨機插入或取代型敲入時,可能會破壞內源基因的表達,使用半合子/雜合子在一定程度上可以避免該影響。)由此可見,cKO小鼠的目標基因型一般是cre/+;flox/flox。(此處+代表wildtype)
 


圖4. 條件性敲除小鼠的繁育策略

 

首先,將Cre雜合子小鼠與flox雜合子或純合子小鼠交配,獲得的Cre與flox雙陽性(Cre/+; flox/+)子代小鼠。之后,再將Cre與flox雙陽性(Cre/+; flox/+)子代小鼠與flox雜合子或純合子小鼠交配,獲得所需的cre/+;flox/flox小鼠為實驗組。一般對照組為同窩+/+;flox/flox小鼠。

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References
[1]. Duffield JS, Humphreys BD. Origin of new cells in the adult kidney: results from genetic labeling techniques. Kidney Int. 2011 Mar;79(5):494-501. doi: 10.1038/ki.2010.338. Epub 2010 Sep 22. PMID: 20861816.

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