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蛋白質組學基礎: 質譜中肽段主要碎裂方式_abio生物試劑品牌網

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蛋白被酶切為長短不一的肽段后,經過ESI等離子源電離,成為帶有若干正電荷的母離子(precursor),然后通過離子通道進入質譜完成MSn譜圖掃描。根據不同的分析需求,可以選擇不同的母離子碎裂方法,如 CID/HCD、ETD等。每種碎裂方法產生不完全相同的碎片離子,借助這些離子的互補信息可實現全面的蛋白序列表征。
01 CID/HCD
碰撞誘導解離( Collision Induced Dissociation, CID ) ,也稱為碰撞活化解離(Collision Activation Dissociation, CAD ) ,基本原理是母離子進入質譜后,在電場中加速以增加離子動能,然后與中性分子(通常是氦、氮或氬)碰撞。在碰撞過程中,部分動能轉化為內能,導致肽骨架的化學鍵斷裂,形成碎片離子。高能碰撞解離 (High-Energy Collision Dissociation,HCD)與CID原理相同,一般在Orbitrap類儀器中使用。CID/HCD主要產生靠近肽段N端的b離子和靠近C端的y離子,是自下而上的蛋白質組學中最主流的碎裂方式(圖1)。
圖1 CID/HCD碎片離子示意圖
02 ECD
電子捕獲解離(Electron capture dissociation,ECD)與傳統的串聯質譜技術互補,主要用于FT-ICR質譜。二硫鍵通常對振動解離穩定,但在 ECD 中優先斷裂,快速且具有特異性,且不穩定的翻譯后修飾和非共價鍵在主鏈鍵解離后也能保持完整。結合ECD,可以實現更高的序列覆蓋,在一定能量下,也可以區分異亮氨酸和亮氨酸。ECD 的主要應用領域包括DNA預測蛋白質序列的Top-down驗證、從頭測序、二硫鍵分析以及翻譯后修飾分析。 圖2 ECD碎片離子示意圖
03 ETD/EAD
電子轉移解離(Electron Transfer Dissociation,ETD)通過將陰離子基團的電子轉移到多肽陽離子上來誘導肽段碎裂。由于ETD會誘導肽/蛋白質主鏈上酰胺鍵的斷裂,因此會產生互補的c離子和z離子(圖3)。由于ETD和CID/HCD產生的序列信息是互補的,因此通常會結合這兩種方法,以提高序列覆蓋率和翻譯后修飾的鑒定(如糖基化)。

電子活化解離(Electron Activation Dissociation,EAD)是基于自由電子轉移實現肽段碎裂的,調節EAD電子能量可適用從單電荷小分子到多電荷大分子的檢測。低能量EAD可用于top down表征完整蛋白的關鍵結構屬性。中能量EAD可以保留PTMs的關鍵離子。高能EAD可用于小分子(如內源性代謝物或藥物代謝產物)的特異性鑒定。
圖3 ETD/EAD碎片離子示意圖

04 UVPD 紫外光誘導解離 (Ultraviolet Photodissociation, UVPD)是Thermo Scientific Tribrid質譜儀所獨有的一種多肽裂解方法,與CID和HCD不同,母離子到達離子阱后,以激光脈沖的紫外線進行照射,光子直接被目標分子吸收,達到足夠的激發態時,多肽即被裂解產生碎片離子。UVPD產生的碎片離子更加豐度,可用于完整蛋白的表征。 圖4 UVPD碎片離子示意圖(JACS Au 2023, 3, 8, 2123–2130)
Tips
PEAKS?軟件對多種碎片離子產生的譜圖均做了算法優化,以實現更高的譜圖解析率,并且支持在同一個工作流中同時分析多個不同類型的數據。在讀取數據時,用戶根據分析需求設定即可。


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